Anti-humane Primärantikörper sind Immunreagenzien, die humane Antigene – darunter Immunglobuline, Zelloberflächenmarker, intrazelluläre Proteine und lösliche Analyten – spezifisch erkennen und an sie binden. Sie werden durch Immunisierung von Wirtsspezies wie Ziege, Kaninchen, Maus, Ratte oder Huhn mit gereinigten humanen Proteinen oder vollständigen Immunglobulinen hergestellt und anschließend mittels Immunoaffinitäts- oder Protein-A/G-Chromatographie gereinigt, um hochaffine Fraktionen zu isolieren. Erhältlich in unkonjugierten oder konjugierten Formaten (HRP, Alkalische Phosphatase, FITC, PE, APC, Alexa Fluor®, Biotin), bieten sie Flexibilität über verschiedene Detektionsplattformen hinweg.
Zu den Spezifitätsoptionen gehören anti-IgG (H+L), anti-IgG (Fc), anti-IgG (Fab) sowie isotypspezifische Reagenzien (IgG1–IgG4, IgA, IgM, IgE, IgD). Weitere Spezifitäten richten sich gegen Zytokine (IL-2, IL-4, IL-6, IFN-γ, TNF-α), Chemokine, Wachstumsfaktoren, CD-Antigene, MHC-Moleküle, Transkriptionsfaktoren, Phosphoproteine und Marker für Infektionskrankheiten. Umfassende Kreuzadsorptionen gegen Serumproteine von Maus, Ratte, Kaninchen, Ziege und Rind eliminieren unspezifische Bindungen in Proben mit mehreren Spezies.
Anwendungen
Anti-humane Antikörper werden in praktisch allen Immunoassay-Formaten eingesetzt. Beim Western Blotting dienen sie dem Nachweis humaner Proteine für Expressions- und Modifikationsstudien. Im ELISA quantifizieren sie Zytokine, Krankheitsbiomarker, therapeutische Antikörper und Marker für Infektionskrankheiten (HIV, HBV, HCV). In der Immunohistochemie ermöglichen sie die Antigenlokalisation in humanen Geweben für die diagnostische Pathologie und die Identifizierung von Krebsbiomarkern. In der Durchflusszytometrie und beim FACS erleichtern sie die Immunphänotypisierung humaner Leukozytensubpopulationen für die Immun- und Transplantationsüberwachung. Bei der Immunpräzipitation und ChIP ermöglichen sie die Anreicherung von Protein- und DNA-Protein-Komplexen. Zusätzliche Anwendungen umfassen Neutralisationstests, Immunfluoreszenzmikroskopie und Zellproliferationsstudien. Optimale Verdünnungen sind anwendungsabhängig. Diese Reagenzien sind ausschließlich für Forschungszwecke bestimmt.
